1 引言
N2O致溫效應(yīng)為CO2的300多倍、CH4的4～21倍，估計(jì)地球上N2O排放對(duì)全球溫室效應(yīng)的貢獻(xiàn)約占5%~6%(IPCC，1996).污水處理廠氮去除過(guò)程會(huì)產(chǎn)生大量N2O(Tallec et al., 2006; Kampschreur et al., 2008)，占水處理全過(guò)程釋放的溫室氣體(包括CO2，CH4和N2O)總量的26%(Kampschreur et al., 2009).我國(guó)城鎮(zhèn)污水處理廠2011年N2O釋放總量估計(jì)約為1.26×109 g(以N計(jì))(王亞宜等，2014).因此，污水生物脫氮過(guò)程中N2O產(chǎn)生及控制是目前研究的熱點(diǎn)之一.
污水生物脫氮過(guò)程中硝化及反硝化過(guò)程均能產(chǎn)生N2O(Kampschreur et al., 2009;Wunderlin et al., 2011;劉秀紅等，2006)，自養(yǎng)硝化過(guò)程N(yùn)2O通過(guò)AOB硝化菌反硝化或羥胺氧化(化學(xué)和生物)產(chǎn)生，其N(xiāo)2O的產(chǎn)生涉及多種酶參與(見(jiàn)圖 1)，羥氨氧化還原酶(Hydroxylamine oxidoreductase，HAO)是在硝化階段將羥胺轉(zhuǎn)化成亞硝酸鹽的氧化還原酶，位于細(xì)胞膜外周質(zhì)中.有研究表明，羥胺在好氧和厭氧條件下均能被HAO氧化(Yamanaka and Sakano et al.，1980)，而N2O是羥胺氧化的副產(chǎn)物(Otte et al., 1999).可見(jiàn)HAO對(duì)N2O產(chǎn)生起著關(guān)鍵調(diào)控作用.
圖1 污水處理硝化過(guò)程N(yùn)2O產(chǎn)生的可能途徑及相關(guān)酶 (其中：AOB(氨氧化菌，Ammonia-oxidizing bacteria)； AMO(氨單加氧酶，Ammonia mono-oxygenase)：HAO(羥胺氧化還原酶，Hydroxylamine oxidoreductase)；NOR(亞硝酸氧化還原酶，Nitrite oxidoreductase))
污水生物處理過(guò)程中，酶是控制N2O釋放的關(guān)鍵所在(Richardson et al., 2009).目前，一些純種自養(yǎng)和異養(yǎng)硝化菌的HAO已經(jīng)分離提純(Wehrfritz et al., 1993，1996; Kurokawa et al., 1985;Hoppert et al., 1995; Zahn et al., 1994;Ono et al., 1996)，這些HAO分子量和結(jié)構(gòu)有所不同(Arciero and Hooper， 1993;Moir et al., 1996;Jetten et al., 1997a;Shimamura et al., 2008).但目前尚無(wú)污水生物處理活性污泥HAO的研究報(bào)道，一個(gè)原因可能是脫氮污泥中硝化菌種類(lèi)復(fù)雜多樣，不利于分離提純HAO而制約了這方面的研究.
不同研究報(bào)道的HAO提取和活性測(cè)定方法有所不同，破碎細(xì)菌細(xì)胞的方法有超聲法(Jetten et al., 1997b)、壓力破碎法(Otte et al., 1999)，有研究使用高滲裂解液(Zhang et al., 2014)輔助細(xì)胞破碎;酶活性測(cè)定時(shí)以鐵氰化鉀作為電子受體，但是所使用的電子受供比也有差異，Otte等(Otte et al., 1999)在測(cè)定發(fā)酵罐中糞產(chǎn)桿菌的HAO時(shí)選用電子受供配比1 : 2，而Tateo Yamanaka等(Yamanaka and Sakanoet al.，1980)從Nitrosomonas europaea菌提取純化HAO時(shí)表明，電子受體超過(guò)4倍的供體羥胺后，羥胺能迅速被氧化成NO2-.Mike等(Jetten et al., 1997b)在研究羥胺代謝時(shí)采用電子受供配比為5 : 2的反應(yīng)試液.由此可見(jiàn)，目前尚無(wú)確定可行的活性污泥HAO酶提取和活性測(cè)定方法.
基于此，本文在前期研究(南亞萍等，2012;劉婧晶等，2014)的基礎(chǔ)上，從破碎方法、裂解液的使用、酶活測(cè)定液電子受供比、反應(yīng)終止劑等方面對(duì)污水生物處理活性污泥中HAO酶的粗提取及酶活測(cè)定方法進(jìn)行了探索研究，旨在為進(jìn)一步探索污水生物處理中N2O產(chǎn)生和控制的酶水平研究奠定基礎(chǔ).
2 材料與方法
2.1 材料來(lái)源
活性污泥取自實(shí)驗(yàn)室處理模擬城市生活污水的SBR反應(yīng)器.該反應(yīng)器的有效容積為6 L，每天運(yùn)行3個(gè)周期，每周期8 h，包括進(jìn)水10 min(充水比為1/2)，厭氧攪拌120 min，好氧240 min，沉淀40 min，出水10 min，閑置60 min.人工廢水由葡萄糖、乙酸鈉、氯化銨、磷酸氫二鉀、氯化鈣、硫酸鎂和氯化鐵配制而成，加入碳酸氫鈉調(diào)節(jié)pH值為6.8～7.8(FE-20型酸度計(jì)，梅特勒-托利多(上海)有限公司).COD約為400 mg · L-1，氨氮約為60 mg · L-1，總磷約為5 mg · L-1.
反應(yīng)器溫度維持在25 ℃;污泥濃度維持在MLSS 3255 mg · L-1(MLVSS/MLSS值在0.80左右).控制曝氣強(qiáng)度在0.6 L · min-1，好氧段DO濃度維持在0.3~0.6 mg · L-1.
當(dāng)氨氮去除率達(dá)到90%以上并穩(wěn)定運(yùn)行時(shí)取樣.取樣時(shí)間點(diǎn)選擇在每周期曝氣開(kāi)始后0.5 h.
2.2 HAO粗酶的提取
取25 mL泥水混合液，在4000 r · min-1離心3 min(J-26XP貝克曼高速冷凍離心機(jī)，美國(guó)貝克曼庫(kù)爾特有限公司生產(chǎn))，傾去上清液，沉淀用緩沖液(50 mmol · L-1 Tris-HCl，pH 7.8，5 mmol · L-1 MgCl2)定容到25 mL，再次離心3 min，傾去上清液，此步驟重復(fù)一次.沉淀備用定容至25 mL后，破碎細(xì)胞.4 ℃條件下，40000×g 冷凍離心30 min，上清液于4 ℃條件下貯存?zhèn)溆?
2.3 細(xì)胞破碎方法
超聲法：用BILON92-II超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)(上海比朗儀器有限公司)于0 ℃的冰-水混合水浴中破碎細(xì)胞，調(diào)節(jié)輸出功率200 W，工作3 s，間歇3 s，破碎次數(shù)分別設(shè)定為30次、60次、99次.
壓力細(xì)胞破碎法：在4 ℃條件下用JN-02低溫超高壓連續(xù)細(xì)胞破碎儀(廣州聚能生物科技有限公司)破碎，設(shè)定壓力50、110、160 MPa，分別破碎1、2、3次.
超聲與裂解液結(jié)合法：洗滌后的沉淀加細(xì)胞裂解液(50 mmol · L-1Tris-HCl(pH 7.5)，10%蔗糖，300 mmol · L-1 NaCl，90 mmol · L-1 EDTA)2 mL、5 mL、10 mL，10 min后，緩沖液定容至25 mL后進(jìn)行破碎，方法同超聲法.
壓力與裂解液結(jié)合法：洗滌后的沉淀加細(xì)胞裂解液2 mL、5 mL、10 mL，10 min后，緩沖液定容至25 mL后進(jìn)行破碎，方法同壓力細(xì)胞破碎法.
2.4 破碎效果評(píng)價(jià)
用ND-2000微量分光光度計(jì)(美國(guó)Nanodrop科技有限責(zé)任公司)測(cè)定破碎后混合液中的DNA含量，將DNA含量高低作為衡量細(xì)胞破碎的程度的指標(biāo).
2.5 HAO酶活性測(cè)定
(1)酶活力測(cè)定原理：根據(jù)HAO酶的氧化還原特性，本實(shí)驗(yàn)以鐵氰化鉀為電子受體，以羥胺為電子供體.羥氨氧化還原酶的活性在400 nm處以鐵氰化鉀的還原量來(lái)計(jì)算酶活性.
(2)酶活性單位定義：25 ℃，pH 8.0條件下每分鐘還原1 μmol K3Fe(CN)6的酶量為一個(gè)酶單位.按下式計(jì)算HAO酶的活性(U · mL-1)，摩爾吸光系數(shù)ε為1 L · mol-1 · cm-1.
酶活性:A =400/[ε·b×t]×VL/V×B 式中，t為時(shí)間(min)，VL為測(cè)定液體積(mL)，V為酶液體積(mL)，B為稀釋倍數(shù)，b為比色血寬度(1 cm).
(3)酶活力測(cè)定步驟：取4 mL反應(yīng)混合液放入試管中，加入適量酶提取液，立即混勻并計(jì)時(shí)，25 ℃恒溫水浴儀(北京市永光明醫(yī)療儀器有限公司)中準(zhǔn)確保溫一定時(shí)間;反應(yīng)完成后立即加入2 mL終止劑終止酶反應(yīng).室溫放置5 min后，UV-2600A分光光度計(jì)(龍尼柯(上海)儀器有限公司)于400 nm處測(cè)定吸光度;空白對(duì)照管先加入2 mL反應(yīng)終止劑，再加酶液.
2.6 測(cè)定方法
粗酶液中總蛋白質(zhì)含量測(cè)定：Bradford法(Bradford，1976); DNA含量：微量分光光度法;酶活性測(cè)定：分光光度法.
2.7 酶活力測(cè)定方法的優(yōu)化
(1)酶反應(yīng)液電子受體與供體比的選定：選擇電子受供比1 : 4、1 : 2、1 : 1、2 : 1、4 : 1，分別取5組平行樣.
(2)反應(yīng)終止劑的選擇：選用20%三氯乙酸及2 mol · L-1 HCl，分別取5組平行樣.
2.8 實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)處理
多組平行試驗(yàn)結(jié)果均以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(±SD)來(lái)表示，組間比較采用SPSS13.0 軟件進(jìn)行單因素或多因素方差分析.
3 結(jié)果與分析
3.1 不同方法的破壁效果
HAO為細(xì)胞膜外周質(zhì)酶，能否完全將菌體細(xì)胞壁破碎是該酶提取的首要因素.本研究探討了五種不同的破壁方法，用微量分光光度計(jì)測(cè)定DNA含量確定破壁效果，同時(shí)測(cè)定酶活力.
首先對(duì)超聲法同一功率下超聲破碎次數(shù)對(duì)破碎效果影響進(jìn)行實(shí)驗(yàn)，結(jié)果見(jiàn)表 1所示.
表1 超聲處理次數(shù)對(duì)污泥破壁的效果
從表 1可知，超聲破碎次數(shù)增加，DNA含量增加，提取的粗蛋白含量增加，HAO酶活增大，說(shuō)明細(xì)胞破碎程度提高.單因素方差分析表明，破碎30次DNA及蛋白質(zhì)量均明顯小于60次和99次(p<0.05)，但是酶活與60次無(wú)明顯差異，與99次相比明顯偏小(p<0.05)，為了縮短實(shí)驗(yàn)時(shí)間及更好的保存酶活性，選擇破碎30次進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn).
表 2 是化學(xué)滲透對(duì)細(xì)菌細(xì)胞破碎效果的影響.從表 2可知，添加細(xì)胞裂解液后，酶活性及DNA比未加的條件下(表 1所示)增加近5倍及多至十幾倍.從DNA結(jié)果來(lái)看，加5 mL和10 mL裂解液沒(méi)有差異(p>0.05);酶活和蛋白質(zhì)5 mL條件均顯著小于10 mL及25 mL條件(p<0.05).但研究過(guò)程發(fā)現(xiàn)添加10 mL及更多裂解液時(shí)，用Br and ford法測(cè)定蛋白質(zhì)容易產(chǎn)生沉淀，在此種情況下，用分光光度計(jì)測(cè)定蛋白質(zhì)比較耗時(shí)，讀數(shù)不穩(wěn)定.
表2 化學(xué)滲透處理對(duì)污泥破壁的效果
基于上述超聲次數(shù)和裂解液用量對(duì)細(xì)胞破碎效果的影響，研究進(jìn)一步探討超聲、壓力及裂解液相互結(jié)合對(duì)破碎效果的影響，以便找出耗時(shí)短、破碎效果好的破碎方法.圖 2是不同破碎條件下，破碎次數(shù)和裂解液對(duì)細(xì)胞破碎效果的影響.
圖2 不同破壁條件下，處理次數(shù)和裂解液對(duì)污泥破碎效果的影響(污泥以mL計(jì))
從圖 2可以看出，用細(xì)胞破碎儀破碎細(xì)胞效果明顯比超聲破碎細(xì)胞效果要好;無(wú)論是超聲還是細(xì)胞破碎儀，加裂解液細(xì)胞破碎效果較不加的要好.
對(duì)3種壓力下的DNA結(jié)果經(jīng)多因素方差分析(0 mL未參與分析)，F(xiàn)(8，26)=7.281(p<0.01)，說(shuō)明壓力、破碎次數(shù)及裂解液用量均對(duì)破碎效果有極其顯著的影響.隨著細(xì)胞破碎儀破碎壓力、次數(shù)增大，破碎效果增強(qiáng);2 mL與5 mL裂解液之間破碎效果有顯著差異(p<0.05)，而2 mL與10 mL、5 mL與10 mL裂解液之間之間破碎效果沒(méi)有顯著差異(p>0.05).從圖中能看出，160 MPa條件下，加5 mL裂解液破碎3次效果是最好的.
3.2 酶活測(cè)定方法優(yōu)化結(jié)果
在HAO酶活測(cè)定過(guò)程中，電子受供比和終止劑的選擇對(duì)酶活力測(cè)定影響較大，因此，本研究進(jìn)行了電子受供比和終止劑對(duì)酶活測(cè)定影響的研究.結(jié)果如下.
3.2.1 酶反應(yīng)液電子受體與供體比的選定
不同微生物菌種、不同的生長(zhǎng)環(huán)境，HAO的活性高低不盡相同，在以往HAO研究電子受供比1 : 2、≥4、5 : 2等的基礎(chǔ)上，做了表 3所示的電子受供比實(shí)驗(yàn).以確定適合污水脫氮處理工藝HAO酶活研究的配比.取5組試樣進(jìn)行測(cè)定.結(jié)果見(jiàn)表 3.
表3 不同電子受體與供體比下測(cè)定的HAO酶活性
在一定條件下，底物濃度飽和時(shí)，酶反應(yīng)速度與酶濃度呈正比，當(dāng)?shù)孜?不論K3[Fe(CN)6]還是NH2OH)濃度受限時(shí)，均會(huì)影響酶活性的測(cè)定結(jié)果.
表 3的結(jié)果表明，受供比1 : 4、1 : 2的酶反應(yīng)液中由于受體K3[Fe(CN)6]不足，在短時(shí)間內(nèi)吸光值減小的幅度很大.對(duì)測(cè)試樣品數(shù)目較多的過(guò)程不適用.而受供比2 : 1、4 : 1條件下，同樣反應(yīng)時(shí)間內(nèi)，受體K3[Fe(CN)6]剩余量較多.這4種受供比反應(yīng)后不太適宜用分光光度計(jì)測(cè)定，因此宜選用電子受供比1 : 1的酶反應(yīng)液做酶活性測(cè)試，本研究用這一受供比也獲得了較其他條件下的最大酶活性(0.368±0.012 U · mL-1).
當(dāng)然，這一配比適用于HAO粗酶測(cè)定，若是經(jīng)過(guò)純化后的HAO，適合的受供比需要進(jìn)行實(shí)驗(yàn)來(lái)進(jìn)一步確定.
3.2.2 反應(yīng)終止劑
與加熱酶失活方法相比，用酸堿讓酶失活更易操作和節(jié)省時(shí)間，本研究中受體K3Fe(CN)6在堿性條件下不穩(wěn)定，因此實(shí)驗(yàn)選取20%三氯乙酸和2 mol · L-1 HCl作為HAO酶活性反應(yīng)的終止劑，選用電子受供比1 : 1的酶反應(yīng)液.取5組試樣進(jìn)行測(cè)定.結(jié)果見(jiàn)表 4.
表4 反應(yīng)終止劑對(duì)HAO活性測(cè)定的影響
從表 4數(shù)據(jù)可知，20%三氯乙酸與2 mol · L-1 HCl作為HAO酶反應(yīng)終止的試劑，酶活測(cè)定值經(jīng)單因素方差分析，無(wú)顯著性差異(p>0.05).通過(guò)測(cè)試兩者的pH，20%三氯乙酸(pH 1.8)溶液酸性極強(qiáng)，文獻(xiàn)(Yamanaka and Sakano et al.，1980; Jetten et al., 1997b; Otte et al., 1999)中采用它作為HAO酶反應(yīng)終止劑.鐵氰化鉀遇強(qiáng)酸時(shí)產(chǎn)生劇毒的氰化物，從減少環(huán)境污染和操作安全的角度，宜選用酸性較弱的2 mol · L-1 HCl溶液作為反應(yīng)終止劑.
3.3 不同破碎條件下，裂解液和破碎次數(shù)對(duì)測(cè)定HAO酶活性的影響
從圖 3可以看出，在不同壓力條件下，用細(xì)胞破碎儀破碎細(xì)胞2次、3次的HAO酶活明顯比超聲條件下酶活要高;加裂解液破碎后HAO酶活要比不加裂解液的HAO酶活高.
圖3 不同破碎條件下，破碎次數(shù)和裂解液對(duì)獲得的HAO酶測(cè)定活性的影響
對(duì)3種壓力下的酶活結(jié)果經(jīng)多因素方差分析(0 mL未參與分析)，F(xiàn)(8，26)=2.718(p<0.01)，說(shuō)明壓力、破碎次數(shù)及裂解液用量均對(duì)酶活有極其顯著的影響.只看壓力變化時(shí)，兩兩壓力之間酶活無(wú)差異(p>0.05);破碎2次與1次之間酶活有極其顯著差異(p<0.01)，而破碎2次與3次之間酶活無(wú)差異(p>0.05).
在不同的壓力條件下，均是加5 mL裂解液的HAO酶活性要高(與10 mL比無(wú)差異(p>0.05))，加10 mL裂解液后酶活反而降低，原因可能是細(xì)胞裂解液中含有EDTA，而HAO的活性位點(diǎn)由c型亞鐵血紅素和血紅素P460構(gòu)成(Hooper et al., 1997)，較多的裂解液加入影響了HAO的活性.
從圖中看出，160 MPa條件下，加5 mL裂解液破碎細(xì)胞2次有最高的HAO酶活力.
3.4 破碎方法、裂解液和破碎次數(shù)對(duì)HAO酶比活力的影響
酶的比活力(specific activity)也就是酶含量的大小，即每毫克蛋白所具有的酶活力.酶的比活力在酶學(xué)研究中用來(lái)衡量酶的純度，對(duì)于同一種酶來(lái)說(shuō)，比活力越大，酶的純度越高
從圖 4可以看出，超聲條件下，酶的比活力比細(xì)胞破碎儀破碎細(xì)胞酶比活要高;超聲條件下，隨著裂解液增多，酶比活力有所增大，但是增加幅度很小.
圖4 不同破碎條件下，破碎次數(shù)和裂解液對(duì)獲得的HAO酶的比活力的影響
對(duì)3種壓力下破碎2次、3次的酶比活力結(jié)果經(jīng)多因素方差分析(0 mL未參與分析)，F(xiàn)(4，17)=16.262(p<0.01)，說(shuō)明壓力、破碎次數(shù)及裂解液用量均對(duì)酶比活力有極其顯著的影響.不同壓力下酶比活力有極其顯著差異(p<0.01);破碎2次與3次之間酶比活力有極其顯著差異(p<0.01)，壓力與次數(shù)相同的條件下，不同裂解液用量組間酶比活力無(wú)差異(p>0.05).
隨著細(xì)胞破碎儀破碎壓力增大，HAO酶比活力減小，說(shuō)明壓力增大后，細(xì)胞破碎效果增強(qiáng)，有更多的蛋白從細(xì)胞中溶出，而HAO酶的量則沒(méi)有隨之增加，分析原因可能是瞬間高壓產(chǎn)生熱量破壞了HAO及其活性.
綜上所述，160 MPa條件下，加5 mL裂解液破碎3次效果是最好的，該條件下破碎細(xì)胞2次有最高的HAO酶活力，但是從酶比活力看，該條件下破碎2次和3次的酶比活力均比110 MPa加裂解液5 mL破碎2次要低(p<0.01)，因此綜合DNA、酶活力和酶比活力考慮，110 MPa加裂解液5 mL破碎2次更適合污水生物處理中HAO的研究，既節(jié)省時(shí)間，又能較好的保持酶活性.具體參見(jiàn)污水寶商城資料或http://szhmdq.com更多相關(guān)技術(shù)文檔。
4 結(jié)論
1)壓力、破碎次數(shù)及裂解液用量對(duì)脫氮活性污泥粗提液中DNA、HAO酶活力及酶比活力均有極其顯著的影響(p<0.01).
2)無(wú)論是超聲還是細(xì)胞破碎儀破碎細(xì)胞，加裂解液破碎效果比不加要好(DNA含量高)，有較高的酶活力(超3~7倍).隨著細(xì)胞破碎儀破碎壓力增大，破碎效果增強(qiáng)，160 MPa條件下，加5 mL裂解液破碎3次效果是最好的.
3)對(duì)相同提取條件下提取的粗酶液，酶活反應(yīng)液電子受體供體之比為1 : 1時(shí)，分光光度法可獲得較高的酶活力.
4)酶反應(yīng)終止劑宜選用2 mol · L-1 HCl溶液.
5)綜合DNA含量、酶活力及酶比活力考慮，110 MPa加裂解液5 mL破碎2次更適合污水生物處理中HAO的研究，既節(jié)省時(shí)間，又能較好的保持酶活性.
